Яремная вена у теленка как найти

Лечебно-профилактические мероприятия в скотоводческой сфере требуют особого внимания и регулярности. Для этого выполняют периодический забор крови у КРС, чтобы проверить здоровье животного. От техники выполнения процедуры зависит качество исследования и будущая производительность племенного поголовья скота.

Как правильно подготовить животное

Кровь у коров берут на анализ для исследования ее биохимического состава. Это помогает исключить инфекционные болезни, подтвердить возможный диагноз ветеринара. Для этого нужна венозная кровь, которую проверяют на лейкоз, бруцеллез, туберкулез. Чтобы не травмировать сильно животное, важно правильно его подготовить к медицинской процедуре.

Обычно забор берут утром перед кормлением. После приема пищи нельзя брать анализ в течение 5 ч. Для серологического исследования берут по 7-10мл материала от КРС. Место для взятия пробы бреют электрической машинкой для стрижки коров для удаления волосяного покрова. Если нужно, то скотину предварительно фиксируют, а после участок нужно обработать антисептическим средством.

Иглы для забора материала должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не повредить противоположную стенку вены, не вызвать повреждения эритроцитов. Перед использованием иглы нужно прокипятить в дезинфекционном кипятильнике.

Методики, которые не требуют фиксации животного, легче переносятся коровами. Любой стресс скажется на количестве удоя, а это принесет финансовые потери. Нельзя брать кровь у самок за 3 недели до отела или в течение этого же времени после родов. Чтобы не было проблем в будущем, соблюдайте технику забора крови, выбирая менее травматичный вариант для животного и самый безопасный для ветеринара.

Все популярные техники забора крови у скота

Взять кровь на анализ у животного можно из хвостовой, яремной и молочной вен. Процедура имеет свои особенности для каждой из зон, но все зависит от скорости и местоположения кровотока.

Из молочной вены

Она находится на животе коровы с 2-х сторон, сбоку от вымени. Лучше всего ее видно у взрослых особей. Этот вариант менее предпочтителен, так как у животного эта зона считается очень чувствительной. Плюс ко всему эта вена залегает более глубоко, чем это кажется на первый взгляд. Корову придется фиксировать, удерживать с разных сторон. А если нет специального оборудования, то для забора крови придется привлекать несколько человек.

Процесс проходит таким образом после удаления волос и обработки антисептиком:

1. Прощупывают пальцами венозный бугорок.
2. Вводят плавно иглу шприца параллельно поверхности кожи.
3. Берут биологический материал.

Такая методика может быть травматичной для крупного рогатого скота, что скажется на удоях. Обычно фермеры стараются использовать другие методики.

Из яремной вены

Для этого используют кровопускательную иглу и стерильную пробирку, куда набирают биоматериал по стенке. Сосуд следует расположить к нижней трети шеи животного. Голову придется зафиксировать, что тоже является стрессом для коровы. Чтобы вызвать быстрое наполнение вены, уменьшить ее подвижность, кровеносный сосуд можно сдавить резиновым жгутом в середине шеи.

Техника следующая:

• Зажимают большим пальцем сосуд на яремной вене.
• Вводят иглу под острым углом в направлении 20–30° к поверхности кожи в направлении к голове. При этом глубина введения – 1 см.
• Собирают нужное количество крови. Она должна стекать по стенке пробирки во избежание разрушения эритроцитов. При необходимости можно сразу смешивать жидкость с нужным количеством антикоагулянта.
• Перед извлечением иглы из яремной вены снимают жгут, а вену пережимают пальцем выше места прокола.
• После извлечения иглы место укола некоторое время сдавливают тампоном, чтобы не было гематомы.
• После снова используем в обрабатываемой зоне дезинфицирующий раствор.

Материал в таких условиях считается нестерильным, а жидкость во время забора может разбрызгиваться.

К минусам этой методики можно отнести:

• Большой риск распространения инфекции на ферме. Пострадают не только животные, но и люди. Это такие болезни как туберкулез, бруцеллез, лейкоз крупного рогатого скота.
• Нужно фиксировать животное.
• Будут осложнения после процедуры – гематома, абсцесс.
• Стресс у скота, снижение удоев минимум на 5%.
• Разбрызгивание крови, которая обязательно попадет на руки ветеринара, кормушку или др. объекты в хозяйстве.

В конце нужно добавить, что полученные пробы – нестерильные.

Из хвостовой вены

Такой метод отличается высокой скоростью забора биологического материала. Животное в этом случае фиксировать не нужно, а сама процедура легко переносится КРС. Последние методики в заборе крови как раз нацелены на взятие материала из хвостовой вены у коров.

Как проходит процедура:

1. Берем хвост коровы на середине длины, а после – поднимает его вверх.
2. Дезинфицируем спиртом область между 2 и 5 позвонком, а также прилегающую к ним зону.
3. Берем стерильную иглу или систему для забора крови в 1 руку, а в другой держим хвост.
4. Иглу нужно вводить перпендикулярно к поверхности хвоста, а глубина введения должна быть от 0,5 до 1 см.
5. Делаем забор биоматериала.

Методика исключает контакт ветеринара с биоматериалом животного, а это является самым большим преимуществом. Трудности в заборе крови в сосуде создает слабый кровоток в этой части тела скота, но вакуумные системы помогают решить эту проблему. В результате процедура выходит эффективной и максимально безопасной.

В чем плюсы вакуумных систем

Применение вакуумных технологий для получения анализа помогает выполнить процедуру КРС максимально быстро и безопасно. Эта методика отлично работает на хвостовой вене. Процесс никак не травмирует скот, убирает прямой контакт ветеринара и животного с биологическим материалом.

Оборудование состоит из иглы и шприца с контейнером. Диаметр иглы обычно составляет 0,9 мм, она снабжается клапаном, который блокирует вытекание крови, а это снижает вероятность появления осложнений. Корпус шприца сделан из прочного пластика, само приспособление играет роль транспортного контейнера. В этой же емкости легко выделить сыворотку или добавить антикоагулянт.

Плюсы вакуумной системы:

• Не нужно фиксировать скот.
• Снижение стресса у животного.
• Можно взять стерильную пробу.
• Удобство использования, так как не нужно позже материал переливать в другую тару.
• Нет прямого контакта ветеринара с биоматериалом.
• Исключается риск разнесения инфекции среди поголовья скота.

Маркировка на таком изделии разрешает использование цветового кодирования, а это позволит сортировать полученные пробирки.

Какие могут быть ошибки

При выполнении обычной методики получения крови на анализ, например, из яремной вены скота, есть вероятность попадания материала на людей и окружающие вещи. Если скот заражен, то появляется риск расползания инфекции по ферме. При этом открытый способ отнимает много времени, требует определенной подготовки (минимум – фиксации животного), сноровки и предельной аккуратности.

Если нарушить нормы асептики и техники получения анализа у КРС, то готовый образец может не отвечать нужным требованиям. У коровы же могут появиться гематомы и абсцессы. Не нужно форсировать забор, так как произойдет частичный гемолиз кровяных клеток.

Как хранить пробу и сыворотку крови

Материал нужно поместить в холодильник при температуре +2…+4°С. Если придется длительное время хранить сыворотку, то нужна температура +20°С. Любое нарушение этих условий привлечет за собой погрешности в анализе. Неумелое встряхивание пробирок во время перемешивания их содержимого или в процессе транспортировки тоже вызывает гемолиз эритроцитов.

Сыворотку крови нужно направить на исследование в течение первых суток после взятия пробы, но не позже 3-го дня (в исключительных случаях). На каждой пробирке указывают номер, кличку животного, ФИО владельца коровы. Все пробы закрывают плотно стерильными пробками, ставят в вертикальное положение для пересылки. Зимой анализы нужно тщательно упаковать, чтобы при перевозке они не замерзли. Обязательно ветеринар, приглашенный на ферму для забора крови, готовит вместе с пробами сопроводительный документ в двух экземплярах.

Крупных животных фиксируют в стоячем положении, применяя при необходимости накрутку или носовые щипцы. Местом пункции яремной вены у лошади (рис. 53) и жвачных служит граница верхней и средней трети шеи. После подготовки поля операции слегка поднимают голову животного вверх, следя за тем, чтобы не напрягались мышцы яремного желоба. Перед операцией сдавливают большим пальцем левой руки яремную вену ниже места пункции, вена фиксируется, наполняется кровью и становится хорошо заметной. Если вена недостаточно ясно вырисовывается, что бывает у упитанных лошадей, а также при сильном напряжении кожной мышцы шеи, приподнимают голову животного несколько выше, ослабляют закрутку и по-

Рис. 52. Приспособления для внутривенных вливаний:

о — аппарат Боброва; б— аппарат Конькова; в — шприц Жанэ; г — воронка; д — бутыль

Рис. 53. Пункция яремной вены лошади и внутривенное вливание:

а — держание иглы; 6— общий вид внутривенного вливания

вторно сдавливают вену. В исключительных случаях на шею накладывают резиновый жгут, чтобы максимально прижать вену, особенно у крупного рогатого скота (рис. 54). Не следует делать пункцию, не имея уверенности в местоположении вены.

Во время пункции срез иглы должен быть обращен к коже, в этом случае уменьшается вероятность прокола противоположной стенки вены и закупорки иглы пробкой из кожи. Иглу направляют вверх против тока крови на середине оси вены под углом 40—45° к коже. Если вена плохо видна или толстая кожа, следует вначале ввести иглу под кожу, а затем уже проколоть вену. При попадании иглы в сосуд кровь сразу же начинает вытекать свободной струей через просвет иглы. Если кровь не течет или выделяется кап-

Рис. 54. Пункция яремной вены крупного рогатого скота

лями, что бывает при закупорке просвета иглы, иглу извлекают и повторяют пункцию в новом месте (выше первой точки).

Иглу, наеденную в вену, продвигают на 2—3 см в ее просвет и соединяют с  наполненным раствором инфузионным аппаратом, который держат ниже уровня иглы. Как только в аппарате появится кроиь, сю поднимают и, убрав палец с вены (снимают жгут), приступают к вливанию. Раствор вливают со скоростью 30—40 мл в 1 мин, что регулируется высотой поднятия инфузионного аппарата. По завершении вливания инфузионный аппарат опускают ниже, пережимают яремную вену выше места пункции, извлекают иглу и обрабатывают операционное поле.

Внутривенное вливание у свиней. Животных фиксируют в стоячем или лежачем положении. Вливание производят в большую ушную вену. Для выявления ее на основании ушной раковины накладывают резиновый жгут (резиновую трубку) или прижимают вену пальцем. При этом вена наполняется и хорошо вырисовывается. Пункцию осуществляют инъекционной иглой с тонкой эластичной трубкой (рис. 55). Иглу вкалывают под углом 25—30° к направлению основания ушной раковины. После появления из просвета иглы крови к шлангу присоединяют шприц, снимают жгут (или палец с вены), вводят необходимое количество раствора и извлекают иглу. Место инъекции в течение 30 с —1 мин прижимают кусочком ваты, смоченным спиртом, и обрабатывают спиртовым раствором йода.

Рис. 55. Пункция большой ушной вены у свиньи

Рис. 56. Пункция плюсневой дорсальной латеральной вены у собаки

Внутривенные вливания у собак и кошек. Животных фиксируют в боковом положении. После подготовки поля операции помощник сдавливает пальцами рук конечность в верхней трети голени или

Рис. 57. Пункция вены предплечья у собаки

плеча (рис. 56, 57). Когда вена наполнится кровью и станет более упругой, делают пункцию иглой, присоединенной к шприцу, направляя конец иглы по току крови. При попадании иглы в вену (в шприц поступает кровь) прекращают сдавливание конечности и медленно вводят раствор. После введения место укола прижимают асептическим тампоном, извлекают иглу и обрабатывают место укола раствором йода.

Вливание в подкожную локтевую вену птиц. Вена расположена под кожей в области плеча, предплечья. Вблизи локтевого сустава выщипывают перья. Нажав пальцами выше локтя, находят наполненную вену. Пункцию делают тонкой иглой, присоединенной к шприцу, наполненному вводимым раствором.

Прокол стенки какой-либо полости (грудной, брюшной), а также капсул суставов, бурс сухожильных влагалищ и других полостей делают с диагностической и лечебной целями. Техника выполнения его будет дана в соответствующих разделах.

Биопсия. Биопсией называют иссечение кусочков тканей или органов для микроскопического исследования с целью уточнения диагноза болезни. Она может производиться как во время операции, так и до нее. Полученный кусочек ткани немедленно помещают в 10%-ный раствор формалина (иногда в спирт) и направляют в лабораторию для гистологического исследования. Рану на месте взятого кусочка ткани зашивают.

Петраков К. А., Саленко П. Т., Панинский С. М. Оперативная хирургия с топографической анатомией животных

В ветеринарных лабораториях уточняется диагноз, определяется эффективность обработок, выявляются скрытые патологические процессы… Первым делом отбирается образец (биопроба). Речь идет о крови, продуктах жизнедеятельности (моче и кале), секрете молочной железы, поте, содержимом желудка, рубца и кишечника, тканях, кусочках органов. Чаще исследуется кровь. Именно о ней мы сегодня и поговорим. Вы узнаете, как получают такой материал у разных видов животных, доставляют его в лабораторию.

В силу нестабильности химического состава крови для получения достоверных результатов нужно соблюдать правила отбора и хранения биологического материала.

Нюансы отбора материала

При отборе крови учитывается суточная динамика и соблюдаются правила антисептики. Кровь следует отбирать перед кормлением. Если же животное получило корм, то надо выждать не менее пяти часов. В крови, отобранной раньше, концентрация белка, глюкозы, липидов, лейкоцитов и др. выше физиологической нормы. Пример: норматив по глюкозе в сыворотке крови у КРС – от 2,2 до 3,5 ммоль/л, но если отобрать кровь через час после кормления, значение показателя увеличивается как минимум в два раза.

Один из факторов, определяющих концентрацию минералов, эритроцитов, – время суток. По этой причине материал повторно отбирается в одни и те же часы.

В некоторых случаях взятие пробы невозможно без нарушения целостности тканей. В подобных ситуациях обязательна асептика-антисептика. Лучший антисептик – 70-градусный этиловый спирт. Правда, ветеринары пользуются им, когда есть необходимость во введении туберкулина. Также эффективен спирт-эфир. В крайнем случае пользуются 3-процентной карболовой кислотой.

В стране имеется широкий ассортимент антисептических средств для обработки места прокола (для взятия крови или инъекции). Основа львиной части антисептиков представлена этиловым спиртом, используемым вкупе со вспомогательными бактерицидными компонентами, усиливающими действие.

При выборе препарата нужно руководствоваться составом, ценой и удобством применения. Себя зарекомендовали антисептические спиртовые средства, используемые в виде аэрозолей.

Большое значение имеет анализ крови и лекарства. Материал для анализа отбирается до лечебных мероприятий. Но в любом случае берутся в учет лекарства, которые получало животное. Так, по причине внутривенного введения средства иногда уменьшается количество эритроцитов, гемоглобина… Использование вакцины вызывает лейкоцитоз.

Чем быстрее кровь окажется в пробирке, тем меньше вероятность получения искаженных результатов. На билирубине, витамине В2 отрицательно сказывается свет. Поэтому пользуются светонепроницаемыми пакетами. Допускается временное хранение материала в ящике. При риске разрушения вещества под влиянием кислорода кровь отбирают в пробирку с вазелиновым маслом: так получаемая сыворотка находится под слоем масла и недоступна для воздуха.

Моменты, учитываемые при выборе места отбора крови:

• видовая принадлежность животного;
• размер животного;
• анатомия сосудов (кровь берется из самых доступных вен);
• опыт, личные предпочтения специалиста.

Взятие крови у коровы

У КРС кровь берется из яремной, хвостовой и молочной вен.

Отбор пробы из яремной вены – наиболее популярная процедура, но требует определенной сноровки при нахождении места прокола и при фиксации животного. Корове необходимо тщательно фиксировать голову и шею, что сказывается на доступе к яремной вене.

В плане безопасности кровь лучше брать из хвостовой вены. Правда, в этом случае приходится иметь дело с медленным кровотоком. Такая проблема решается посредством так называемых «пробирок с вакуумом», более тщательной очистки места прокола и опыта. Допустимо использовать «вакуум» шприца: после прокола кожи и сосуда к игле присоединяем шприц (со стабилизатором или без) и набираем кровь. Стоит помнить, что форсированное насасывание крови в шприц может привести к частичному разрушению (гемолизу) клеток крови, что отразится на корректности результатов. И все же мы рекомендуем практиковать именно этот способ отбора крови.

Техника отбора крови из хвостовой вены:

1. Животное фиксируют в станке.
2. Очищают область у корня хвоста.
3. Иглу берут в одну руку, второй рукой удерживают хвост и поднимают его так, чтобы визуально можно было контролировать место введения иглы.
4. Игла вводится на глубину примерно 1 см перпендикулярно нижней поверхности хвоста, по центру. Лучше прокол делать на расстоянии 8-12 см от основания хвоста. Можно использовать ориентир «ширина кисти»: от основания хвоста отступить 1,0-1,5 ширины кисти. В этой области хвостовая вена имеет наибольший диаметр (около 0,5-0,8 см) и вероятность попасть в нее максимальна.

Молочные вены определяются как тяжи на нижнебоковой поверхности живота с двух сторон, идущие от вымени вперед. Они очень хорошо видны и доступны, что создает псевдо-эффект банальности процедуры. На самом деле при проколе молочных вен самая главная проблема – безопасность! Во-первых, действия происходят вблизи тазовых конечностей. Во-вторых, кожа, покрывающая сосуд, достаточно толстая, поэтому необходимо точно рассчитать силу удара при проколе. Автор получал травмы рук при таком взятии крови у коровы.

Взятие крови у свиней

Лучшее место для процедуры – сосуды ушных раковин, кончик хвоста, глазной синус, передняя полая вена.

Многие специалисты отсекают кончик хвоста, что ведет к гемолизу. При этом стерильность пробы оставляет желать лучшего. Картина ухудшается кровотечением и возникающим каннибализмом.

Эффективнее брать материал из передней полой вены, но для этого нужен определенный опыт. К тому же, такой способ является трудоемким.

Удобнее материал брать из глазного синуса. Стратегия взятия биопробы:

• Фиксируют свинью за верхнюю челюсть с помощью петли. Поросят допускается фиксировать в спинном положении, дополнительно ограничить подвижность головы рукой.
• Кровь берется при помощи вакуумного шприца. Допускается использовать обыкновенную иглу и пробирку.
• Иглу вводится во внутренний угол глаза под третье веко, скосом к кости (не к глазному яблоку!). При этом манипулируют канюлей так, чтобы оттеснить глазное яблоко иглой (условно ориентируясь острием на противоположный локтевой бугор).

С опытом легко определяется необходимая глубина введения иглы: 2-3 см – у взрослых свиней, 0,5-1,0 см – у поросят. Начинающим ветврачам можно иглу вводить до ощущения упора в кость.

• Если все сделано правильно, то при отводе иглы от кости кровь должна начать течь сама. Как правило, на пробирка объемом 20 мл наполняется за полторы минуты (быстрее при визге животного).
• Капающая кровь из места прокола убираются тампоном.

Тип крови

Перед процедурой надо знать, какая кровь нужна для исследования: стабилизированная («несвернутая») или нестабилизированная (свернутая).

Стабилизированную кровь предохраняют от свертывания, добавляя в нее антикоагулянт. Такая кровь, как правило, используется для общего клинического анализа (определения количества эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, гемоглобина, гематокрита, СОЭ, цветового показателя).

Применяемые на практике антикоагулянты представлены различными солями и биологическими веществами:

• калия или натрия оксалаты;
• натрий лимоннокислый;
• трилон Б;
• гепарин. Запрещен при ПЦР-диагностике.

Чтобы стабилизировать кровь у пернатого, удваивается доза антикоагулянта.